WWW.KONF.X-PDF.RU
БЕСПЛАТНАЯ ЭЛЕКТРОННАЯ БИБЛИОТЕКА - Авторефераты, диссертации, конференции
 


Pages:     | 1 |   ...   | 11 | 12 || 14 | 15 |   ...   | 18 |

«ФЕДЕРАЛЬНОЕ ГОСУДАРСТВЕННОЕ БЮДЖЕТНОЕ ОБРАЗОВАТЕЛЬНОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ ВЫСШЕГО ПРОФЕССИОНАЛЬНОГО ОБРАЗОВАНИЯ «САРАТОВСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ АГРАРНЫЙ УНИВЕРСИТЕТ ИМЕНИ Н.И. ВАВИЛОВА» ...»

-- [ Страница 13 ] --

На первом этапе происходит взаимодействие между очищенным антигеном (Аг), сорбированным на твёрдой фазе и устанавливаемым антителами (Ат), связывающимися с Аг. На втором этапе проводится выявление связанных с твёрдой фазой иммунных комплексов, образовавшихся в результате первой реакции. Для этого добавляются специфичные к «первым» вторые Ат, конъюгированные с ферментом. На третьем этапе, после удаления не связавшегося конъюгата, в реакционную смесь добавляют бесцветный субстрат (хромоген), который под действием фермента превращается в окрашенный продукт, детектируемый визуально (качественное и полуколичественное определение) или спектрофотометрически (количественное определение).

Интенсивность окрашивания лунки пропорциональна концентрации связавшегося конъюгата и, следовательно, концентрации определявшихся в образце Ат. В качестве ферментативной метки используются разнообразные ферменты: пероксидаза хрена, щелочная фосфотаза, бета-галактозидаза и т. д. Наиболее часто применяется пероксидаза хрена, субстратам которой служит тетра-метил бензидин (ТМБ). Для остановки ферментативной реакции применяют серную кислоту («стоп реагент»), который добавляют во все исследуемые и контрольные пробы. Учет результатов проводят спектрофотометрически при длине волны 450 нм. Разработаны также варианты ИФА с использованием авидинбиотиновой системы, систем усиления ферментативной реакции, проведения реакции на фильтрах и другие.

Иммуноферментный анализ по сравнению с другими методами лабораторной диагностики, обладает рядом преимуществ.

1. Универсальность. С помощью различных вариантов ИФА можно количественно и качественно выявлять любые Аг и Ат в самых разнообразных образцах, что выводит применение этого метода далеко за пределы диагностики инфекций. Определение Аг применяется для обнаружения компонентов инфекционных агентов (Аг вирусов, бактерий и др.), измерения концентраций гормонов, онкомаркёров, белков острой фазы и многих других белков, для обнаружения токсинов и антибиотиков в кормах и продуктах животноводства.

Обнаружение специфических Ат позволяет не только выявлять наличие инфекционного процесса, но и определять его стадию, осуществлять ретроспективную диагностику и оценку напряжённости поставкцинального иммунинета, диагностировать ряд аллергических и аутоиммунных патологий.

2. Высокая чувствительность и специфичность. Современные ИФА тестсистемы позволяют выявлять нано- и пикограммовые количества Аг, что достигается за счёт тщательного подбора высокоаффинных моноклональных Ат и использования ряда систем амплификации сигнала.

3. Удобство и простота проведение анализа. Для проведение ИФА не требуется отдельных помещений и дорогостоящего оборудования. Современные отечественные тест-системы отличаются стабильностью при хранении всех ингредиентов (до года и более) и относительно низкой стоимостью. Постановка реакции занимает от 1 до 3 часов. Возможен как инструментальный (количественный), так и визуальный (качественный) учёт результатов.

Все эти преимущества определили широкое применение ИФА во всех областях ветеринарной медицины и ветеринарно-санитарной экспертизы кормов и продуктов животноводства.

Сравнение ИФА и ПЦР.

Методы ИФА и ПЦР (полимеразная цепная реакция) широко применяются в современной лабораторной диагностике. Хотя оба метода наиболее часто используются для диагностики инфекционных заболеваний и, на первый взгляд, дублируют друг друга, на самом деле эти методы измеряют различные проявления присутствия инфекционного агента в организме, а получаемые с их помощью результаты дополняют и взаимоподтверждают друг друга.

ИФА-анализ основан на выявлении Аг инфекционного агента и/или Ат, сформировавшихся в ответ на взаимодействие этих Аг с иммунной системой.

ПЦР-анализ выявляет ДНК и РНК инфекционных агентов (бактерии, вирусы, грибы), присутствующих в организме. Поэтому в некоторых случаях результаты, получаемые с помощью ПЦР и ИФА-диагностики, могут не совпадать.

Обычно это происходит вследствие нескольких причин:

1. Метод ПЦР выявляет наличие молекул ДНК и РНК инфекционного агента, присутствующего в организме, а ИФА измеряет наличие Ат к инфекционному агенту. На ранних стадиях инфекционного процесса специфические Ат могут отсутствовать – в этом случае ПЦР даст положительный, а ИФА – отрицательный результат. Напротив, после завершения инфекционного процесса и полного удаления инфекционного агента из организма, специфические Ат к нему остаются в циркуляции многие месяцы, а иногда и годы.

В подобных случаях ПЦР даёт отрицательный, а ИФА – положительный результат. Поэтому ветеринарный врач, интерпретирующий результаты ИФА, должен понимать, что само по себе наличие специфических Ат говорит о наличие контакта иммунной системы пациента с инфекционным агентом в прошлом, но не всегда – о присутствии инфекционного агента в организме в настоящий момент.

2. Разница в тонкой специфичности ИФА- и ПЦР-методов. Получение положительного результата в ИФА и отрицательного в ПЦР может быть вызвано использованием в ИФА-анализе тест-систем, специфичных к Аг более широкой группы микроорганизмов относительно определяемых с помощью ПЦР. Например, тест-система для ИФА-диагностики настроена на выявление всех видов хламидий: С. pneumonia, C. pecorum, C. psitaci, а в проведении ПЦР-анализа может быть использована тест-система, выявляющая только С. trachomatis. Вот почему, ИФА-анализ на С. pneumonia будет положительным, а ПЦР – отрицательным.

3.Разница в используемом материале. Материал для ПЦР получают из места предполагаемой локализации инфекции. Материалом для ИФА служит сыворотка крови, в которой выявляются специфические Ат. Как результат, в некоторых случаях ПЦР-диагностика может давать отрицательный, а ИФА – положительный результат. Например, хламидии могут локализироваться в разных местах организма. В случае хламидиозного сальпингита, ПЦР-анализ образца, взятого в области шейки матки, даст ложноотрицательный результат, но ИФА-диагностика все равно выявит выработку антител, сопровождающую инфекционный процесс.

4. Хронические инфекционные заболевания могут стать причиной разницы в результатах ИФА и ПЦР-диагностики. При этом зачастую ПЦР дает положительный, а ИФА – отрицательный результат. Иммуносупрессия, наблюдающаяся при хроническом инфекционном процессе, может сопровождаться существенным снижением выработки специфических Ат, что приведет к ложноотрицательному результату ИФА-диагностики. Аналогичная ситуация может наблюдаться и на ранних этапах инфекции, когда иммунная система ещё не успела начать выработку IgG-антител, определяемых большинством наборов. Для половых инфекций подобный период «молчания» ИФАдиагностики может достигать двух недель. В подобных случаях избежать ложноотрицательных результатов можно, определяя также IgM-антитела.

Подводя итоги, можно сказать, что ни ИФА, ни ПЦР-анализы сами по себе не являются панацеей в вопросах диагностики инфекций. Грамотное применение этих методов и осмысленная интерпретация получаемых результатов позволяют существенно дополнить и расширить возможности существующих методов клинических и лабораторных исследований.

О.Н. Полозюк Донской государственный аграрный университет, Ростовская область, Россия

ВЛИЯНИЕ ГЕННОЙ МУТАЦИИ В ГЕНЕ RYR-1

НА ФИЗИКО-ХИМИЧЕСКИЕ СВОЙСТВА МЯСА

Изучение пороков РSЕ – и DFD мяса у свиней с помощью методов молекулярной генетики подтвердило, что одной из причин этого заболевания является мутация в рианодин рецепторном гене (Ryr-1), кодирующем синтез одного из белков мышечной клетки ( J. Fujii, K. Otsu, F. Zorzato et al., 1991;

D.N. MacLennan, C. Duff, F. Zorzato et al., 1990; Н.В. Рыжова, Л.А. Калашникова, 2001).

Чувствительность свиней к стрессам, к злокачественной гипертермии зависит от генотипа по гену рианодинового рецептора RYR-1, при этом доминантный аллель N характеризует устойчивость, а рециссивный аллель n- чувствительность к стрессам. Вне зависимости от генотипа партнера все потомство свиней с генотипом NN является стрессустойчивым. Чувствительность потомства, полученного от скрытого носителя Nn, зависит от генотипа второго родителя (Н.А.Зиновьева с соавт., 2005).

Целью нашей работы явилось определение физико-химических и химических свойств мяса с наличием признаков РSE- и DFD- свинины.

Исследования проводились в ОАО «Медведовского мясокомбината» Тимашевского района Краснодарского края.

Для изучения физико-химических свойств и химического состава мяса через 24 часа после убоя свиней (созревания мяса) отбирали из каждой туши образцы длиннейшей мышцы спины (400 г) на участке между 9-12 грудными позвонками.

Химический анализ мышечной ткани определялся по общепринятой методике (В.А. Коваленко, З.Д. Гильман, А.С. Орлова и др., 1987) зооанализа.

Химический состав характеризовали по содержанию (%) воды, сухого и органического вещества, «сырой» золы, протеина и жира.

Определение в мышечной ткани влаги, белка и жира проводили в соответствии с ГОСТ 9793-74 «Продукты мясные. Методы определения влаги», ГОСТ 15042-86 «Мясо и мясные продукты. Методы определения жира».

По результатам проведенного нами исследования установлено, что рН мяса у гомозиготных NN и гетерозиготных стрессустойчивых подсвинков 1/2СМ-1 Л через 24 часа после убоя соответствовало норме, а у гетерозиготных стресчувствительных Nn животных было обнаружено 4 туши с пороком РSE и 2

– с DFD. Анализ полученных материалов свидетельствует о том, что РSE- мясо по сравнению с DFD-свининой помимо низкого уровня рН имеет меньшую влагоудерживающую способность (на 15,6 %), а также тенденцию к худшим значениям по цвету мяса, содержанию «сырого» жира; в то же время в ней было несколько больше «сырой» золы и триптофана, выше белково-качественный показатель (на 1,41).

Физико-химические свойства и химический состав мяса подопытных животных

–  –  –

При рассмотрении физико-химических свойств и химического состава NOR-мяса гомозиготных помесных подсвинков по сравнению с пороками РSE-мяса гетерозиготных животных видно, что рН, влагоудерживающая способность, окраска мяса, содержание «сырого» жира было у них выше, а содержание триптофана и белково-качественный показатель ниже. Столь низкий показатель кислотности является причиной денатурации некоторых саркоплазматических белков, что способствует потере влагоудерживающей способности мяса. Свинина приобретает бледную окраску. Подобное явление снижения качества свинины получило название синдрома палевого, мягкого, экссудативного состояния мышц – PSE (pale, soft, exudative). Продукция, изготовленная из PSE-мяса, быстро закисает при хранении.

Наши исследования совпадают с результатами исследований В. И. Степанов, Н.В. Михайлов, 1991 и Г.В. Максимова (1995).

При рассмотрении NOR – мяса гомозиготных помесных подсвинков по физико-химическим свойствам и химическому составу: рН, влагоудерживающей способности, интенсивности окраски мяса показатели были ниже на 0,55; 4,05 % и 4,97 ед. экст. 103 соответственно, белково-качественный показатель был выше и составил 8,24, что на 1,12 выше, чем у гетерозиготных стрессчувствительных животных с пороками DFD – мяса.

Таким образом, с использованием генно-диагностического теста селекционная оценка стресс – резистентности становится значительно эффективнее.

Путем определения генотипа животных по гену RYR-1 можно создать гомозиготную NN стресс – резистентную популяцию и избавиться от дефектов PSE- и DFD- свинины.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Зиновьева Н.А. Оценка животных по генетическим маркерам / Н.А. Зиновьева, К.М.

Шавырина, В. Адаменко и др.// Промышленное и племенное свиноводство. – 2005. – С.

18–20.

2. Максимов Г.В. Качество мясной продукции и стрессустойчивость свиней в связи с селекцией на мясность // Сельскохозяйственная биология. – 1995. – №. 2. – С. 13–30.

3. Степанов В.И. Свиноводство и технология производства свинины/ В.И. Степанов, Н.В.Михайлов// – М.: Агропромиздат, 1991. – 336 с.

4. Рыжова Н.В. Продуктивные качества гетерозиготных свиней – носителей гена мутантного аллеля / Н.В.Рыжова, Л.А.Калашникова // Вестн. Рос. акад. с.-х. наук. – 2002. – №3. – С. 64–67.

5. Brien P.J. Porcine malignant hyperthermia susceptibility: increased calcium-sequestering activity of skeletal muscle sarcoplasmic reticulum // Can. J. Vet. Res. – 1986. – №. 50. – P. 329– 337.

6. Fujii J., Otsu K., Zorzato F. Identification of a mutation in the porcine gene // J. Anim.

Breed. Genetics. м 1991. – №. 116. – Р. 263–267.

7. MacLennan D.N. Ryanodine receptor gene is candidate for predisposition to malignant hyperthermia / D.N. MacLennan, C.Duff, F. Zorzato et al.// Nature. – 1990. – v. 343.

О.Н. Полозюк, Е.С. Полозюк Донской государственный аграрный институт, Ростовская область, Россия

ВЛИЯНИЕ ИММУНОСТИМУЛЯТОРОВ ГАМАВИТА

И ВИТСТИМА НА РОСТ И РАЗВИТИЕ ПОДСВИНКОВ

Основными показателями, характеризующими состояние свиноводства, являются годовой выход поросят на основную свиноматку, среднесуточный прирост на откорме, конверсия кормов в прирост и годовое производство прироста живой массы на одну начальную голову.

В своей работе мы ставили перед собой цель изучить влияние стимуляторов на рост и развитие поросят в динамике.

С целью определения влияния гамавита и витстима на сохранность, массу и физиологическое развитие поросят в период доращивания на племенной свиноводческой ферме учхоза «Донское» Октябрьского района Ростовской области был поставлен научно- производственный опыт на поросятах СМ-1.

Для этого по принципу аналогов было сформировано три группы животных две опытных и контрольная – по 20 голов в каждой. Животных кормили по нормам ВИЖ, в соответствии с рационом принятом в хозяйстве.

Отбор животных в группах осуществлялся при соблюдении принципов аналогов с учётом происхождения, возраста, живой массы, пола и развития.

Препараты гамавит и витстим вводили у основания ушной раковины первый раз в 7дн. возрасте три инъекции через три дня по 0,5 мл на голову, а повторно в месячном возрасте три инъекции через три дня по 1,5 мл на голову.

Взвешивание поросят как опытных, так и контрольной групп, помимо первого дня жизни проводили на 21, 60, 120, 150, 180 сутки жизни.

Анализируя возрастную динамику живой массы тела поросят видно, что животные опытных групп на протяжении всего периода эксперимента превалировали над контрольной группой, так в возрасте 21 день – в 1 опытной группе на 13,5, – на 22,8 % (Р0,95), в 60 дн. возрасте – на 19,1 (Р0,95) и 23,7 % (Р0,99), в 120 дн. – 11,9 и 16,3% (Р0,95), а в 180 дн. на 9,97 и 17,0 % (Р0,99) соответственно.

–  –  –

В возрасте пяти–семи дней поросятам-сосунам помимо материнского молока начинали давать подкормки в виде коровьего молока, а с десятого дня к молоку прибавляли распаренные концентраты. В этот период у поросят после поедания дополнительных кормов, довольно часто развивалась диарея.

Проведенные наблюдения показали, что поросята опытных групп расстройство желудочно-кишечного тракта переносят в более легкой форме, и многие поросята без применения лекарственных веществ на вторые – третьи сутки после разжижения каловых масс чувствовали себя удовлетворительно, аппетит был не нарушен, каловые массы сформированы. Молодняк контрольной группы расстройство пищеварения переносил более тяжело и без оказания лечебной помощи на третьи – четвертые сутки часто погибал. Между опытными и контрольной группами животных потери молодняка за период опыта значительно различались. Из-за множества стресс-факторов, которые поросята «пережили» (ветеринарные обработки, перегруппировки, смена технологических помещений, смена рациона), к окончанию опыта в контрольной группе пало 6 голов, в первой опытной 3, во второй 2 головы. Сохранность поросят составила соответственно 85, 90 и 70 %. Как известно переболевшие поросята отстают в росте, в результате чего мелковесных поросят в период отъема в контрольной группе было на 23,1 (Р0,95) и 28,4 % (Р0,99) больше чем в опытных группах соответственно.

Отметим также, что средняя масса тела поросят в опытных группах колебалась от 14,6 до 22,4 кг, а вариабельность массы тела животных контрольной группы от 11,4 до 16,8 кг.

На протяжении всего эксперимента показатели среднесуточного прироста массы тела поросят опытных групп превалировали над показателями контрольной группы за весь учетный период на 46,1 (Р0,95) и 78,6 г (Р0,99) соответственно.

Результаты наших исследований совпадают с исследованиями А.Ф. Сенюшкина (1965), Л.А. Голева с соавт. (1998), Л.А. Бахиревой (2000) и других ученых которые указывают, что у свиней после введения стимулирующих препаратов, улучшается усвоения питательных веществ, что способствует повышению среднесуточных приростов.

Таким образом, поросята получавшие, иммуностимуляторы амавит и витстим за весь период наблюдения имели преимущество в приросте живой массы, сохранности, более легко переносили алиментарное расстройство пищеварения. Количество мелковесных поросят в опытных группах было меньше, среднесуточный прирост массы тела больше, что привело к сокращению сроков выращивания, а следовательно, экономии кормов и снижению себестоимости продукции.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Бахирева Л.А. Результаты скармливания фосфатидов тяжелосупоросным свиноматкам / Л.А. Бахирева // Проблемы производства свинины. Материалы девятого заседания межвузовского координационного совета по свиноводству и Республиканской научнопроизводственной конференции. – п. Персиановский, 2000. – С. 35–37

2. Голев Л.А. Использование биологически активных препаратов в свиноводстве /Л.А.

Голев, В.И. Клименко, Л.В.. Бояринцев, В.К. Хапутин // Свиноводство, 1998. – № 2. – С. 13–15.

3. Сенюшкин А.Ф. Влияние тканевых препаратов на активность кишечных ферментов у свиней / А.Ф. Сенюшкин // Уч. записки Казанского вет института, 1965. – Т. 95. – С. 141– 145.

В.П. Полянский Курская государственная сельскохозяйственная академия имени И.И. Иванова, г. Курск, Россия

ДИНАМИКА КОРТИЗОЛА В КРОВИ ЛАКТИРУЮЩИХ КОРОВ

РАЗНОГО ГЕНЕТИЧЕСКОГО ПРОИСХОЖДЕНИЯ

Обмен веществ в организме и его регуляция зависят от генетического происхождения животных. В связи с этим нами была поставлена задача изучить уровень кортизола в крови лактирующих коров, принадлежащих к разным линиям. Для проведения исследования было сформировано 3 группы лактирующих коров, по 10 голов в каждой группе, с примерно одинаковой молочной продуктивностью, которая составляла около 8 тыс. кг молока за лактацию в каждой группе. Кормление животных было одинаковым и соответствовало их уровню молочной продуктивности.

Кровь у животных отбирали из хвостовой вены до утреннего кормления 1 раз в месяц. Кортизол в крови определяли иммуноферментным методом.

В результате наших исследований было установлено, что уровень кортизола в крови лактирующих коров подвержен значительным изменениям. На 1 месяце лактации концентрация кортизола в крови лактирующих коров у линии Атос составила 58,6±4,43 нмоль/л, у линии Водопад – 56,2±3,19 нмоль/л, у линии Монок – 57,0±3,81 нмоль/л.

В период лактации, соответствующий максимальному удою (пик лактации), концентрация гормона в крови во всех исследуемых нами линиях составила: линия Атос 84,63±4,63 нмоль/л, линия Водопад 82,17±3,77 нмоль/л, линия Водопад 80,14±4,05 нмоль/л, что выше по сравнению с 1 месяцем у линии Атос показатель концентрации кортизола в крови выше на 44,4 %, у инии Водопад – выше на 46,3%, у линии Монок – выше на 40,5 % В дальнейшем по мере течения лактации концентрация кортизола закономерно понижалась и достигла своего минимума на 8 месяце лактации и составила по линиям: линия Атос 53,1±3,51 нмоль/л, линия Водопад 50,6±3,73 нмоль/л, линия Монок 51,8±3,71 нмоль/л. Коэффициент корелляции между показателем продуктивности и показателем концентрации коризола в период лактации составил по линиям: линия Атос r = 0,37, линия Водопад r = 0,46, линия Монок r = 0,42.

Следующий пик концентрации кортизола приходится также на период сухостоя. При этом наблюдается резкий скачок концентрации кортизола в крови у всех исследуемых линий коров и показатели составили у линии Атос 90,4±3,75 нмоль/л, у линии Водопад 87,9±3,79 нмоль/л, у линии Монок 82,3±4,48. По сравнению со спадом концентрации кортизола, который наблюдали на 8 месяце лактации, в крови лактирующих коров показатели гормона, полученные в период сухостоя у линии Атос выше на 70,3 %, у линии Водопад выше на 73,7 %, у линии Монок выше на 58,9 %.

–  –  –

Динамика кортизола в крови коров разного генетического происхождения По-видимому, это явление связано с тем, что кортизол способствует усилению синтеза половых гормонов в плаценте перед родами, что, в свою очередь, способствует изгнанию плода.

Следует заметить, что в проведенном нами исследовании существенных различий между разными линиями коров черно-пестрой породы выявлено не было.

Таким образом, проанализировав полученные результаты исследований, можно сделать вывод о том, что концентрация кортизола в крови лактирующих коров зависит от фазы лактации, и практически не зависело от генетического происхождения лактирующих коров одинаковой молочной продуктивности.

А.Ю. Попейко, В.К. Сайфулина, Н.Д. Баринов, И.И. Калюжный Саратовский государственный аграрный университет имени Н.И. Вавилова, г. Саратов, Россия

ЛЕЧЕНИЕ НЕСПЕЦИФИЧЕСКОЙ БРОНХОПНЕВМОНИИ

У СВИНЕЙ

Респираторные заболевания свиней широко распространены во всех странах, где есть свиньи и наносят свиноводству значительные экономические потери. Заболеваемость составляет 30–70 % и более, летальность до 40 %, наибольший отход от 60 до 150 дней. Одним из распространенных заболеваний дыхательной системы является бронхопневмония, которая может охватывать до 90 % поголовья свиней. Экономический ущерб от этого заболевания может составлять на крупных комплексах 262 429 500 руб. (не учитывали перерасход кормов и т. д.) На систему органов дыхания возложены очень важные для организма функции:

• газообмен (у млекопитающих 92–98 % от общего газообмена);

• иммунная защита организма (по всей значимости не уступает тимусу, селезенке, лимфоузлам) – выработка иммуноглобулинов -А, нейтрализующих бактерии, вирусы;

• поддерживание тончайшего баланса простагландинов (внутриклеточных гормонов), участвующих в управлении работой головного мозга, печени и других внутренних органов;

• в легочной ткани происходит биохимическая коррекция таких сложных веществ, как ренин, ангиотензин, альдостерон (регуляция функций почек, обменные процессы, нормализация кровяного давления);

• в легочной ткани происходит дозревание молодых клеток крови (эритроциты, моноциты);

• в легких синтезируется тромболастин, гепарин;

• в легких протекают процессы липидного обмена (жирные кислоты расщепляются липопротеазами с выделением энергии), синтезируются фосфолипиды, глицерин;

• в легких происходит водный обмен;

• очень важная функция легких в поддержании КОС в организме.

Особое внимание обращает на себя строение органов дыхания, влияющее на функцию дыхательной системы. Дыхательные пути выстланы слизистой оболочкой, образованной мерцательным эпителием. Каждая клетка мерцательного эпителия имеет около 20 ресничек, совершающих 160–250 колебательных движений в минуту в противоток вдыхаемому воздуху и тем самым продвигая выделенную слизь от бронхиол к бронхам со скоростью 1–10 мм/мин. и от бронхов к гортани 10–18 мм/мин.

Слизистая трахеи синтезирует:

• серотонин (усиливает тонус сосудов, снимает утомляемость мышечных волокон);

• допонин (расширяет бронхи);

• бомбезин (стимулирует обмен веществ в легких);

• полипептид ВИП (регулирует сократительную способность гладких мышечных волокон).

Внутренняя поверхность альвеол (основное место газообмена) выстлана однослойным плоским эпителием, который продуцирует поверхностноактивное вещество – сурофактан (предотвращает спадение и слипание альвеол при дыхании), при отсутствии которого происходит ателектаз альвеол.

Сложность в лечении бронхопневмонии свиней заключается в разнообразии этиологических факторов заболевания.

Наукой и практикой подмечено, доказано и изучено множество классификаций пневмоний свиней. На основании анализа было предоставлено более 6 различных вариантов классификаций пневмоний. Особое внимание заслуживает классификация, предложенная нашими учеными (П.И. Притулиным) и она была одобрена для практического применения Генеральной сессией международного эпизоотического бюро (МЭБ) в Париже в 1974 г.

Этой классификацией предусмотрено разделение пневмонии на три основных группы:

1. Симптоматическая (пневмония сопровождает основное заболевание).

2. Незаразная (бытовая) (неудовлетворительное содержание, кормление свиней).

3. Заразная (пневмония вызванная инфекционным патогенном).

Представленная классификация пневмоний облегчает практикам диагностику, лечение и профилактику данного заболевания.

Для первой группы пневмоний характерным является присутствие возбудителя основного заболевания (б. Ауэски и т.д.).

Для второй группы – отсутствие патогенного агента.

Для третьей – в отличие от второй группы обязательным является наличие заразного начала, которым могут быть вирусы, бактерии и т.д.

В свою очередь представленные патогены делятся по группам:

Вирусы:

I группа (первичные патогены, индуцирующие клинические признаки и поражения легких):

• Репродуктивного и респираторного синдрома свиней (РРСС);

• Цирковирус типа 2 (ЦВС-2);

• Вирус гриппа свиней (ВГС);

• Вирус б. Ауэски (ВБА);

• Респираторный короновирус свиней (РКВС) – вирус-мутант ТГС (трансмиссивный гастроэнтерит свиней).

II группа – цитомегаловирус – есть во всех свинарниках и проявляется при снижении иммунитета у поросят и при инфицировании другими вирусами и бактериями).

III группа – парамиксовирус – второстепенная роль в патологии дыхательных путей (парамиксовирус, парвовирус, аденовирус, реовирус, вирус энцефаломиокардита свиней).

Бактериальные патогены:

I группа – основные первичные вдыхаемые бактерии при попадании в дыхательные пути вызывают развитие пневмонии (Mycoplasma hyopneumoniae Actinobacillus pleuropneumoniae, Bordetella bronchiseptica)/ II группа – второстепенные (вторичные) – только в случае поражения другими вирусами, микоплазмами и т.д. (Pasterella multocida, Aaemophilus parasius, Streptococcus suis, Mucoplasma hyorhinis)/ III группа – переносится кровья при септицемии. (Solmonella choleraesuis, Actinobacillus suis, Actinomyces pyogenes, Actinobacterum pyogenes).

При обследовании больных животных, условий их содержания и кормления нами было установлено: неспецифической бронхопневмонией поражено достаточно большое поголовье свиней; технологией содержания животных не предусмотрен моцион; при этом отдельные пометы поросят более устойчивы к заболеванию (от определенных хряков).

Перечисленные причины способствуют снижению резистентности организма свиней, что приводит к изменениям в слизистой оболочке дыхательных путей (нарушается функция мерцательного эпителия), а так же изменяется серозная оболочка альвеол (нарушается функция однослойного плоского эпителия). На фоне этих изменений снижается защитная функция слизистой и серозной оболочек, что способствует развитию патологического процесса.

Учитывая высокую регенеративную способность слизистой и серозной оболочек, но при этом постоянное действие этиологических факторов, заболевание принимает затяжную форму течения.

Клиническими признаками болезни были: кашель (особенно утром перед кормлением); чихание, выделение слизи из носовых ходов, учащение дыхания, учащение пульса, незначительным повышением температуры тела, общее угнетение, животные вяло реагировали на раздачу корма; отмечались сгорбленность у животных; отсутствие иерархической борьбы в группе; отставание в прирост живой массы. В крови больных животных отмечали снижение эритроцитов, гемоглобина, увеличение количества лейкоцитов за счет юных и палочкоядерных нейтрофилов, при затяжном течении, когда процесс переходил в хроническую форму (в основном у большинства поросят) – количество лейкоцитов приближалось к норме, но отмечали увеличенное количество эозинофилов, комплементарная и лизоцимная активность сыворотки была понижена.

По нашим наблюдениям клинические признаки заболевания наиболее ярко проявлялись в возрасте 137–148 дней.

Начало заболевания характеризовалось отказом от корма, иногда рвотой.

Предвестником возникновения заболевания является «беспорядок» в клетке, хаотичное передвижение животных, т.е. животные отдыхали по всей клетке.

Температура тела в этот период иногда увеличивалась на 0,5–0,7 °С, дыхание до 47–53 в минуту и спустя 2–3 дня появлялись основные признаки болезни.

Иногда, особенно утром, кашель становился изнуряющим, до посинения пятачка. У животных отмечали в основном абдоминальный тип дыхания.

При аускультации (провести сложно) прослушивали жесткое везикулярное дыхание. В передних участках легких прослушивали жесткое бронхиальное дыхание. У больных животных отмечают позу «сидячей собаки». В период приступа кашля наблюдали посинение пятачка, кончиков ушей, низа живота, копытец, а иногда в этот период наступала гибель животного. В клетке из 20 голов, больных было от 8 до 12 голов, т.е. 40–60 %, а в некоторых клетках до 95 % заболевших животных (особенно в полузданиях, находящихся с северной стороны).

Динамика заболевания свиней зависела от сезона года, т.е. заболеваемость, вынужденный убой и отход свиней увеличивался в осенний-зимнийвесенний период и значительно сокращался с весны до осени.

Результаты, полученные при проведении лечебных мероприятий

–  –  –

Симптоматические и инфекционные бронхопневмонии исключили на основании выраженной сезонности, характера течения заболевания и отсутствия специфического возбудителя (по данным лаборатории). При посадке больных поросят к здоровым (одного возраста и 50/50) здоровые животные не заболевали до конца откорма.

В качестве лечебных мероприятий было рекомендовано:

Опытной группе – раствор Тиалонга (производство «Нита-Фарм») (раствор тиамулина пролонгированного действия – в 1 мл – 100 мг. Тиамулина полусинтетического дитерпенового антибиотика плевромутилина, продуцируемого Pleurotus mutulis) в дозе 3,5 мл на голову.

В контрольной группе животных лечили методом, принятым в хозяйстве (антибиотики + сульфаниламиды).

Результаты исследования предоставлены в таблице, из которой видно, что рекомендованные лечебные мероприятия позволяют получить значительное снижение заболеваемости свиней неспецифической бронхопневмонией и улучшить продуктивные качества животных.

Выводы.

1. По результатам проведенных исследований имеющую место бронхопневмонию следует отнести к группе неспецифической.

2. От использования антибиотика Тиалонга (производство «Нита-Фарм»

г. Саратов) получен положительный терапевтический эффект, позволяющий рекомендовать его для лечения поросят больных неспецифической бронхопневмонией.

3. Сроки и поэтапное проведение терапии считать оптимальными.

Т.А. Проценко, Л.С. Назарова Саратовский государственный аграрный университет имени Н.И. Вавилова, г. Саратов, Россия

БИОХИМИЧЕСКИЙ СОСТАВ МАТРИКСА БИОПЛЕНОК

КЛИНИЧЕСКИХ ИЗОЛЯТОВ CANDIDA ALBICANS

В хирургической практике ветеринаров применяются устройства многоразового пользования из биополимерных материалов, включающие катетеры, шунты, протезы. На поверхности этих материалов, как и на коже, и слизистых оболочках формируются биопленки (Gordon Ramage et all., 2001).

Биопленки могут образовывать прокариоты и грибы, в том числе дрожжеподобные. От этих биопленок периодически отделяются планктонные клетки (Елинов, 2009). Они могут инфицировать организм оперированного животного. Если в составе биопленок находиться диморфный гриб Candida albicans, то у животного разовьется кандидоз, трудно поддающийся лечению.

Candida albicans, представляет собой диморфный гриб, который может быть как комменсалом, так и оппортунистическим патогеном, способным вызывать различные инфекции, начиная от поверхностных поражений кожи и слизистых оболочек и заканчивая сепсисом опасным для жизни. Предрасполагающими факторами для этого являются: иммунодиффециты, иммуносупрессивная, антибактериальная терапия. Дрожжевые клетки представляют собой адгезивную форму, а гифы – инвазивную, проникающую из покровных тканей в глубжележащие. Прикрепившиеся к поверхности, дрожжи начинают образовывать органический матрикс, который их замуровывает и предохраняет от любых наблагоприятных воздействий (Silva-Dias at all., 2009).

Основа биопленки – межбактериальный матрикс, объем которого составляет до 80 % массы биопленки. Этот матрикс у бактерий включает полисахариды, белки, нуклеиновые кислоты (Flemming, Wingender, 2009). В отношении кандид, прежде всего, C. albicans в доступной литературе мы не нашли подробной информации о составе этого матрикса. Имеется лишь напоминания, о том, что биопленки этого патогенна включают экзогликаны (Елинов Н.

П. 2009) Вместе с тем сведения об этом составе могут быть полезными для подбора средств, предотвращающих ее образование или разрушающих ее.

С учетом вышеописанного, целью настоящей работы было изучение биохимического состава матрикса биопленок клинических изолятов Candida albicans.

Исследования проводили с 23-мя штаммами клинических изолятов C.

albicans. В качестве поверхности для создания биопленки использовали стерильные полистироловые чашки Петри диаметром 40 мм. В них вносили по 3 мл среды Сабуро с суспензией дрожжевых клеток, инкубировали при 37 °С в течение 2 суток. Затем изучали наличие матрикса биопленки и его состав. Кислые мукополисахариды окрашивали альциановым синим, белки – конго красным, РНК – по методу Браше и ДНК- по методу Фельгена (Волкова и др.).

В результате экспериментов выявлено, что все взятые нами штаммы образовывали биопленку в составе которой, обнаруживали изучаемые нами органические вещества. В количественном отношении у всех штаммов преобладали полисахариды и РНК, остальные компоненты были представлены мелкими вкраплениями. Однако у разных штаммов было разное содержание компонентов матрикса. Полисахаридов больше образовывали штаммы № 2, 3, 7, 9, 10, 12, 19, 20, 21, 22; РНК было больше у штаммов № 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 9, 20, 22; ДНК – у № 2, 4, 7, 8, 10, 12, 16, 23, а белков – № 1, 9, 11, 13, 14, 16, 20, 22, 23, 24.

Таким образом, максимальный уровень полисахаридов, РНК, ДНК и белка отмечен у штамма № 2, полисахаридов и РНК – у штаммов № 3, 7, 9, 20 и 22, полисахаридов и ДНК – у штаммов № 10, 12. Кроме органического матрикса в состав биопленки входили дрожжевые формы и гифы.

Следовательно, способность к образованию органического матрикса биопленки через 2 суток с момента инкубации и имелась у всех штаммов C.

Albicans, но была разной степени выраженности с преобладанием в его составе полисахаридов и РНК у большего числа клинических изолятов.

В.С. Прудников, В.Н. Мицкевич, А.В. Прудников Витебская ордена «Знак Почета» государственная академия ветеринарной медицины, г. Витебск, Республика Беларусь

ГЛУБИННАЯ ОБРАБОТКА ИНКУБАЦИОННЫХ ЯИЦ

РАСТВОРАМИ НАТРИЯ ТИОСУЛЬФАТА И АСКОРБИНОВОЙ

КИСЛОТЫ ДЛЯ ПОВЫШЕНИЯ ЖИЗНЕСПОСОБНОСТИ

КУРИНЫХ ЭМБРИОНОВ И ЦЫПЛЯТ

В настоящее время хорошо известно, что повышение иммунной реактивности и естественной резистентности организма цыплят в эмбриональный период развития способствует в дальнейшем увеличению их жизнеспособности и продуктивности.

При этом установлено (Вавилова О.В., 2010; Сулейманов Ф.М., 2010 и др.), что такие препараты, как иммунал, созданный на основе эхинацеи пурпурной и ксидифон – регулятор обмена кальция обладают стимулирующим влиянием на эмбриогенез при погружении яиц в 1,5 %-ные растворы данных препаратов на вторые сутки от начала инкубации. Целью наших исследований явилось изучение эффективности глубинной обработки инкубационных яиц раствором натрия тиосульфата и аскорбиновой кислоты.

Материал и методы исследований. Для исследования отбирали яйца, полученные от домашних беспородных кур яичного направления в количестве 39 штук, которые разделили на 3 группы по 13 яиц в каждой. Яйца первой группы служили контролем, яйца второй группы на 20 минут до инкубации при комнатной температуре погружали в 1,5 % раствор натрия тиосульфата, а 3-й группы – в 1 % раствор аскорбиновой кислоты. По окончании инкубации определяли процент выводимости цыплят. На 7-й и 21-й день после инкубации у всех цыплят определяли живую массу и по 4–5 цыплят из каждой группы путем декапитации убивали для определения массы органов иммунной системы. Одновременно изучали морфологический состав периферической крови и фагоцитарную активность псевдоэозинофилов.

Результаты исследований. Полученные нами результаты исследований показали, что процент выводимости цыплят из яиц, обработанных растворами натрия тиосульфата и аскорбиновой кислоты, составил от 69,2 до 84 %. Причиной невыводимости цыплят из оставшихся яиц явилась их неоплодотворение.

На 7-й и 21-й день после инкубации живая масса цыплят была самой высокой в группе, где яйца подвергались глубинной обработке раствором натрия тиосульфата и составила соответственно 78,50±2,14 и 161,23±5,12 граммов, что было достоверно выше по сравнению с контролем, соответственно на 5,34 и 14,43 граммов, живая масса цыплят, полученных из яиц, обработанных аскорбиновой кислотой была также выше контрольных показателей, но эти данные были недостоверны.

Масса тимуса, бурсы фабриция и селезенки у цыплят, полученных из яиц, обработанных натрия тиосульфатом во все сроки исследования также была выше по сравнению с другими группами. Наиболее высокой эта разница отмечалась на 21-й день после инкубации и составила по сравнению с контролем по тимусу 0,27 г (р0,01), по бурсе фабриция – 0,26 г (р0,001) и по селезенке – 0,06 г (р0,05). По группе цыплят, полученных их яиц, обработанных аскорбиновой кислотой эти показатели были достоверно выше по сравнению с контролем по бурсе фабриция на 0,11 г (р0,05) и по селезенке на 0,06 г (р0,05).

В периферической крови наиболее выраженные изменения наблюдались также у цыплят, полученных из яиц, обработанных 1,5 % раствором натрия тиосульфата и характеризовались на 7-й день после инкубации повышением по сравнению с контролем на 8,0*109/л количества лейкоцитов (р0,01) на 6,0*109/л числа тромбоцитов и на 12,0 г/л содержание гемоглобина. У цыплят, выведенных из яиц, обработанных 1 % раствором аскорбиновой кислоты статистически достоверно возрастало только содержание лейкоцитов (на 4,2*109/л, р0,05).

В лейкограмме цыплят 7-дневного возраста под действием натрия тиосульфата к этому времени статистически достоверно возрастало по сравнению с контролем процентное содержание Т-лимфоцитов (с 37,9±1,65 до 46,4±2,38, р0,01) и уменьшалось число сегментоядерных псевдоэозинофилов (с 36,2±1,48 до 28,8±2,13, р0,01), при этом содержание других клеточных элементов существенно не изменялось. В лейкограмме цыплят, полученных из яиц, обработанных аскорбиновой кислотой также статистически достоверно уменьшалось по сравнению с контролем количество сегментоядерных псевдоэозинофилов (с 36,2±1,48 до 29,8±2,94, р0,01) и возрастало на 2,7 % число -клеток (р0,01).

На 21-й день после инкубации в лейкограмме цыплят под влиянием натрия тиосульфата статистически достоверно по сравнению с контролем уменьшалось относительное содержание Т-лимфоцитов (с 32,8 до 24,8 %, р0,01) и было повышенным количество В-клеток на 6,4 % (р0,01) и моноцитов на 2 % (р0,01). В лейкограмме цыплят, полученных из яиц, обработанных аскорбиновой кислотой показатели форменных элементов крови существенно не отличались от контрольных показателей.

При изучении фагоцитарной активности псевдоэозинофилов нами установлено, что у цыплят, выведенных из яиц обработанных натрия тиосульфатом процент фагоцитоза превышал показатели контроля на 7-й и 21-й день после инкубации в 1,2 раза (р0,01), фагоцитарный индекс увеличивался только на 7-й день после инкубации и составлял 3,78±0,12 против 3,49±0,14 у контрольных цыплят, фагоцитарное число также возрастало во все сроки исследования и составляло на 7-й день 1,84±0,14 против 1,46±0,08 в контроле.

На 21-й день эти показатели были соответственно 1,76±0,10 в опыте и 1,54±0,06 в контроле (р0,05).

При глубинной обработке яиц аскорбиновой кислотой процент фагоцитоза у цыплят 7-дневного возраста и фагоцитарный индекс также возрастали по сравнению с контрольными показателями соответственно на 12,24 и 5,4 %, тогда как фагоцитарное число существенно не изменялось. На 21-й день после инкубации показатели фагоцитарной активности псевдоэозинофилов у цыплят данной опытной группы и в контроле были примерно одинаковыми.

Результаты проведенных нами гистологических исследований иммунокомпетентных органов цыплят опытных групп на 7-й и 21-й дни после инкубации позволяют сделать заключение, что применение растворов натрия тиосульфата и аскорбиновой кислоты во время инкубации оказывает положительное влияние на рост и развитие селезенки, бурсы фабриция и тимуса.

Наиболее выраженными эти изменения были у цыплят, полученных из яиц, обработанных натрия тиосульфатом и характеризовались повышением количества лимфоидных узелков в селезенке, увеличением содержания лимфоцитов, плазмоцитов и макрофагов в тяжах красной пульпы, увеличением плотности расположения лимфоцитов в корковых зонах долек тимуса, повышением содержания бластов в них, увеличением количества лимфоидных узелков крупных размеров со светлыми реактивными центрами в мозговой зоне в бурсе фабриция со скоплением там средних и больших лимфоцитов.

Заключение. Глубинная обработка инкубационных яиц натрия тиосульфатом оказывает более стимулирующее влияние на эмбриогенез, рост и развитие цыплят после инкубации по сравнению с обработкой их аскорбиновой кислотой.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Вавилова О.В. Ксидифон и иммунал – стимуляторы эмбрионального развития птицы /О.В. Вавилова // Птицеводство. – 2009. – № 11. – С. 18–21.

2. Вавилова О.В. Стимуляция эмбрионального развития иммунокомпетентных органов у кур /О.В. Вавилова, Ф.И. Сулейманов // Птица и птицепродукты – 2010. – № 1. – С. 39–41.

3. Сулейманов Ф.И. Повышение жизнеспособности куриных эмбрионов за счет активизации иммунореактивной системы организма. Науч.-издат. рекомендации /Ф.И. Сулейманов, О.В. Вавилова, В.А. Голубцова // Великие луки: РИО ВГСХА. – 2010 – 33 с.

В.М. Руколь Санкт-Петербургская государственная академия ветеринарной медицины, г. Санкт-Петербург, Россия

СОВРЕМЕННЫЕ ПОДХОДЫ К ЛЕЧЕНИЮ КОРОВ

С ГНОЙНО-НЕКРОТИЧЕСКИМИ БОЛЕЗНЯМИ КОНЕЧНОСТЕЙ

Введение. В настоящее время одной из основных проблем хирургической патологии у крупного рогатого скота молочного направления являются гнойно-некротические болезни дистального отдела конечностей. Болезни пальцев и копытец у крупного рогатого скота широко распространены как на промышленных комплексах, так и на крупных специализированных фермах [1].

Они приносят значительный экономический ущерб этим хозяйствам. Экономические потери при заболеваниях пальцев и копытец довольно внушительные. Болезни в дистальной части конечностей приводят к большим потерям молока, мяса, наблюдается преждевременная выбраковка животных, естественно все это сказывается на формировании стада и его воспроизводстве, и наконец – определенные потери с расходами на лечение. В некоторых странах Западной Европы болезни конечностей – одна из самых распространенных причин выбраковки животных. Так в молочном скотоводстве Нидерландов проблема болезней конечностей стоит на третьем месте после мастита и бесплодия у крупного рогатого скота [2].

Чем интенсивнее условия ведения животноводства, тем чаще регистрируют болезни в дистальной части конечностей. На отдельных молочных комплексах и фермах с привязным содержанием коров мы отмечали деформацию копытец до 55 % животных, из них 23,7 % отмечалась хромата, а при беспривязном безвыгульном содержании на комплексах деформированные копытца имели до 70 % коров, а хромату регистрировали у 25 % животных [3].

Целью работы явилось выяснить терапевтическую эффективность препаратов «Биохелат-гель» и «Биохелат-концентрат» и их влияние на профилактику гнойно-некротических заболеваний дистального отдела конечностей.

Материалы и методы. Для лечения и профилактики гнойнонекротических поражений дистального отдела конечностей были использованы хелатные препараты «Биохелат-гель» и «Биохелат-концентрат» фирмы ООО «Рубикон». Данные препараты в своем составе содержат цинк и медь в виде хелатных соединений, органические кислоты (муравьиная и уксусная), а также поддерживающие и прикрепляющие компоненты. Хелатные соединения более устойчивы к воздействию негативных влияний, таких как навоз и температура. Поэтому более низкая концентрация минералов может дать более эффективные результаты. Находящаяся в препарате медь обладает антибактериальным эффектом, имеет важное значение для твердости роговой части копытец, а цинк способствует восстановлению кожи и также обладает менее выраженным антибактериальным действием. Гелевая основа способствует проникновению активнодействующих компонентов препарата (хелата меди и цинка) глубоко в ткани, а поддерживающие и прикрепляющие компоненты способствуют длительному прикреплению препарата на пораженных участках, препятствуя их загрязнению.

Для контроля терапевтической эффективности лекарственных препаратов для лечения заболеваний конечностей по принципу условных аналогов было сформировано две группы.

Коровам первой (контрольной) группы проводили обрезание излишне отросшего копытцевого рога, механическую очистку кожи вокруг язвы, удаление с поверхности язвы мертвых тканей. Обрабатывали изъязвленную поверхность 3%-ной перекисью водорода, водным раствором фурацилина (1:5000).

Высушивали повреждения и кожу вокруг тампонированием. Для лечения животных контрольной группы применяли жидкий линимент по Вишневскому 1 раз в 3 дня до клинического выздоровления. На пораженное копытце накладывали защитную бинтовую повязку. Повязку покрывали вазелином.

При лечении животных второй (опытной) группы проводили обрезание излишне отросшего копытцевого рога, механическую очистку кожи вокруг язвы, удаление с поверхности язвы мертвых тканей. Обрабатывали изъязвленную поверхность 3 %-ной перекисью водорода, водным раствором фурацилина (1:5000). Высушивали повреждения и кожу вокруг тампонированием.

В дальнейшем для лечения применяли:

• в первый день лечения препарат «Биохелат-гель», нанося его на изъязвленные поверхности шпателем. Накладывали защитную бинтовую повязку;

• через 6 дней повязку снимали, проводили механическую очистку кожи вокруг язвы. Обрабатывали поверхность 3 %-ной перекисью водорода, водным раствором фурацилина (1:5000). Высушивали повреждения и кожу вокруг тампонированием. Применяли препарат «Биохелат-гель», нанося его на поверхность язвы шпателем. Давали гелю высохнуть в течение нескольких минут прежде, чем расфиксировать конечность;

• на девятый день (после механической очистки копытец струей воды) продолжали лечение препаратом «Биохелат-концентрат» методом опрыскивания под давлением 10 %-ного раствора препарата из ранцевого распылителя;

• на 14-й день (после механической очистки копытец струей воды) проводили лечение препаратом «Биохелат-концентрат» методом опрыскивания под давлением 5 %-ного раствора из ранцевого распылителя.

В дальнейшем, после механической очистки копытец струей воды, с профилактической целью каждый 7 день проводили обработку дистального отдела конечностей препаратом «Биохелат-концентрат» методом опрыскивания под давлением 5 %-ного раствора препарата из ранцевого распылителя.

Животным контрольной группы, после предварительной очистки, обработку язв проводили растворами антисептиков, затем припудривали сложным порошком борной кислоты с перманганатом калия 1:1 и накладывали защитную повязку. На третьи сутки лечения проводили перевязку и в дальнейшем использовали в качестве лечебного средства линимент Вишневского.

Перевязку проводили через 72 часа до исчезновения клинических признаков заболевания.



Pages:     | 1 |   ...   | 11 | 12 || 14 | 15 |   ...   | 18 |

Похожие работы:

«МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РЕСПУБЛИКИ БАШКОРТОСТАН МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ РЕСПУБЛИКИ БАШКОРТОСТАН ФГБОУ ВПО «БАШКИРСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ АГРАРНЫЙ УНИВЕРСИТЕТ» СОВЕТ МОЛОДЫХ УЧЕНЫХ УНИВЕРСИТЕТА МОЛОДЕЖНАЯ НАУКА И АПК: ПРОБЛЕМЫ И ПЕРСПЕКТИВЫ МАТЕРИАЛЫ IV ВСЕРОССИЙСКОЙ НАУЧНО-ПРАКТИЧЕСКОЙ КОНФЕРЕНЦИИ МОЛОДЫХ УЧЕНЫХ (16-17 ноября 2011 г.) Уфа Башкирский ГАУ УДК 63 ББК 4 М 75 Ответственный за выпуск: председатель Совета молодых ученых,...»

«МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ ФЕДЕРАЛЬНОЕ ГОСУДАРСТВЕННОЕ БЮДЖЕТНОЕ ОБРАЗОВАТЕЛЬНОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ ВЫСШЕГО ОБРАЗОВАНИЯ «САРАТОВСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ АГРАРНЫЙ УНИВЕРСИТЕТ ИМЕНИ Н.И. ВАВИЛОВА»ТЕХНОЛОГИЯ И ПРОДУКТЫ ЗДОРОВОГО ПИТАНИЯ Материалы IХ Международной научно-практической конференции, посвященной 20-летию специальности «Технология продукции и организация общественного питания» САРАТОВ УДК 378:001.8 ББК Т3 Т38 Технология и продукты здорового питания: Материалы IХ...»

«МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ ФЕДЕРАЛЬНОЕ ГОСУДАРСТВЕННОЕ БЮДЖЕТНОЕ ОБРАЗОВАТЕЛЬНОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ ВЫСШЕГО ПРОФЕССИОНАЛЬНОГО ОБРАЗОВАНИЯ «САРАТОВСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ АГРАРНЫЙ УНИВЕРСИТЕТ ИМЕНИ Н.И. ВАВИЛОВА» СПЕЦИАЛИСТЫ АПК НОВОГО ПОКОЛЕНИЯ (экономические науки) Сборник статей Всероссийской научно-практической конференции САРАТОВ УДК 378:001.89 ББК 4 М74 М74 Специалисты АПК нового поколения (экономические науки): Сборник статей Всероссийской научно-практической конференции....»

«Министерство образования и науки РФ Сибирский государственный технологический университет МОЛОДЫЕ УЧЕНЫЕ В РЕШЕНИИ АКТУАЛЬНЫХ ПРОБЛЕМ НАУКИ Всероссийская научно-практическая конференция (с международным участием) 14-15 мая 2015г. Сборник статей студентов и молодых ученых Том I Красноярск Министерство образования и науки Российской Федерации ФГБОУ ВО «Сибирский государственный технологический университет» МОЛОДЫЕ УЧЕНЫЕ В РЕШЕНИИ АКТУАЛЬНЫХ ПРОБЛЕМ НАУКИ Сборник статей студентов, аспирантов и...»

«МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ ФЕДЕРАЛЬНОЕ ГОСУДАРСТВЕННОЕ БЮДЖЕТНОЕ ОБРАЗОВАТЕЛЬНОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ ВЫСШЕГО ОБРАЗОВАНИЯ САРАТОВСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ АГРАРНЫЙ УНИВЕРСИТЕТ ИМЕНИ Н.И. ВАВИЛОВА МЕЖДУНАРОДНАЯ НАУЧНО-ПРАКТИЧЕСКАЯ КОНФЕРЕНЦИЯ, ПОСВЯЩЕННОЙ 15-ЛЕТИЮ СОЗДАНИЯ КАФЕДРЫ «ЗЕМЛЕУСТРОЙСТВО И КАДАСТРЫ» И 70-ЛЕТИЮ СО ДНЯ РОЖДЕНИЯ ОСНОВАТЕЛЯ КАФЕДРЫ, ДОКТОРА СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ НАУК, ПРОФЕССОРА ТУКТАРОВА Б.И. Сборник статей 16-18 сентября 2015 г. Саратов 2015 УДК 339.13 ББК...»

«МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ НАУЧНО-ИНФОРМАЦИОННОЕ ОБЕСПЕЧЕНИЕ ИННОВАЦИОННОГО РАЗВИТИЯ АПК («ИНФОРМАГРО – 2010») МАТЕРИАЛЫ V Международной научно-практической конференции Москва УДК 002:338.436.33 ББК 73 Н 3 Составители: Д.С. Буклагин, Э.Л. Аронов, А.Д. Федоров, В.Н. Кузьмин, О.В. Кондратьева, Н.В. Березенко, С.А. Воловиков, О.В. Гришина Под общей научной редакцией члена-корреспондента Россельхозакадемии В.Ф. Федоренко Научно-информационное обеспечение инновационного Н...»

«К О Н Ф Е Р Е Н Ц И Я О Р ГА Н И З А Ц И И О БЪ Е Д И Н Е Н Н Ы Х Н А Ц И Й П О ТО Р ГО ВЛ Е И РА З В И Т И Ю Доклад о наименее развитых странах, 2015 год Трансформация сельской экономики Обзор КОНФЕРЕНЦИЯ ОРГАНИЗАЦИИ ОБЪЕДИНЕННЫХ НАЦИЙ ПО ТОРГОВЛЕ И РАЗВИТИЮ Доклад о наименее развитых странах, 2015 год Трансформация сельской экономики ОбзОр ОРГАНИЗАЦИЯ ОБЪЕДИНЕННЫХ НАЦИЙ Нью-Йорк и Женева, 2015 год Примечание Условные обозначения документов Организации Объединенных Наций состоят из прописных...»

«ФГБОУ ВПО «Госуниверситет – УНПК» Департамент сельского хозяйства Орловской области Некоммерческое Партнерство «Орловская гильдия пекарей и кондитеров» Ассоциация сельхозтоваропроизводителей, предприятий пищеперерабатывающих производств и торговли – «Орловское качество».ЗДОРОВЬЕ ЧЕЛОВЕКА И ЭКОЛОГИЧЕСКИ ЧИСТЫЕ ПРОДУКТЫ ПИТАНИЯ-20 МАТЕРИАЛЫ Всероссийской научно-практической конференции 31 октября 2014 г., г. Орел Орел 2014 УДК 664 + 60] (062) ББК 36.80-9я 431+36.80-я 4 З-46 Здоровье человека и...»

«Министерство сельского хозяйства Российской Федерации Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования «Пермская государственная сельскохозяйственная академия имени академика Д.Н. Прянишникова»МОЛОДЕЖНАЯ НАУКА 2015: ТЕХНОЛОГИИ, ИННОВАЦИИ Материалы Всероссийской научно-практической конференции молодых ученых, аспирантов и студентов, посвященной 85-летию основания ФГБОУ ВПО Пермская ГСХА и 150-летию со дня рождения Д.Н. Прянишникова (Пермь,...»

«СДННТ-ПЕТЕРБУРГСНИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ АГРАРНЫ Й УНИВЕРСИТЕТ НАУЧНОЕ ОБЕСПЕЧЕНИЕ РАЗВИТИЯ АПК В УСЛОВИЯХ РЕФОРМИРОВАНИЯ ЧАСТЬ I САНКТ-ПЕТЕРБУРГ МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ САНКТ-ПЕТЕРБУРГСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ АГРАРНЫЙ УНИВЕРСИТЕТ НАУЧНОЕ ОБЕСПЕЧЕНИЕ РАЗВИТИЯ АПК В УСЛОВИЯХ РЕФОРМИРОВАНИЯ ЧАСТЬ I Сборник научных трудов САНКТ-ПЕТЕРБУРГ Научное обеспечение развития АПК в условиях реформирования: сборник научных трудов по материалам международной научно-практической...»

«Министерство сельского хозяйства РФ Департамент научно-технологической политики и образования Министерство сельского хозяйства Иркутской области Иркутская государственная сельскохозяйственная академия МАТЕРИАЛЫ Международной научно-практической конференции молодых учёных «Научные исследования и разработки к внедрению в АПК», посвященной 80-летию образования ИрГСХА (28-29 апреля 2014 г.) Иркутск, 2014 УДК 63:0 ББК 4 Н 347 Научные исследования и разработки к внедрению в АПК: Материалы...»

«Федеральное агентство научных организаций России Отделение сельскохозяйственных наук РАН ГНУ Прикаспийский научно-исследовательский институт аридного земледелия Региональный Фонд «Аграрный университетский комплекс» Прикаспийский научно-производственный центр по подготовке научных кадров НАУЧНЫЕ И ТЕХНОЛОГИЧЕСКИЕ ПОДХОДЫ В РАЗВИТИИ АГРАРНОЙ НАУКИ (Материалы III Международной научно-практической конференции молодых учёных) Том I Москва – 201 Федеральное агентство научных организаций России...»

«ББК БАШМАЧНИКОВ Владимир Федорович, док тор экономических наук, профессор, один из основателей фермерского движения в России, возглавлявший 16 лет Ассоциацию крестьянских (фермерских) хозяйств и сельскохозяйственных кооперативов России (АККОР), ныне главный научный сотрудник ВИАПИ им. А.А.Никонова, почетный Президент АККОР. В книге на основе анализа значимых успехов фермерского сектора российского сельского хозяйства обосновывается насущная необходимость и показывается реальная возможность его...»

«Министерство сельского хозяйства Российской Федерации ФГБОУ ВПО «Ульяновская государственная сельскохозяйственная академия им. П.А. Столыпина» II Всероссийская студенческая научная конференция В МИРЕ НАУЧНЫХ ОТКРЫТИЙ Том II, часть 1 Министерство сельского хозяйства Российской Федерации ФГБОУ ВПО «Ульяновская государственная сельскохозяйственная академия им. П.А. Столыпина» II Всероссийская студенческая научная конференция В МИРЕ НАУЧНЫХ ОТКРЫТИЙ Том II, часть 1 Ульяновск – 2013 Технические...»

«АЗАСТАН РЕСПУБЛИКАСЫ АУЫЛ ШАРУАШЫЛЫЫ МИНИСТРЛІГІ МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РЕСПУБЛИКИ КАЗАХСТАН АЗА ЛТТЫ АГРАРЛЫ УНИВЕРСИТЕТІ КАЗАХСКИЙ НАЦИОНАЛЬНЫЙ АГРАРНЫЙ УНИВЕРСИТЕТ «АГРОНЕРКСІПТІК КЕШЕНДІ ДАМЫТУДАЫ ЫЛЫМ МЕН БІЛІМНІ БАСЫМДЫ БАЫТТАРЫНЫ ЖАА СТРАТЕГИЯСЫ» «НОВАЯ СТРАТЕГИЯ НАУЧНО-ОБРАЗОВАТЕЛЬНЫХ ПРИОРИТЕТОВ В КОНТЕКСТЕ РАЗВИТИЯ АПК» ІІ ТОМ Алматы Жалпы редакциясын басаран – Есполов Т.И. Редакциялы жым: алиасаров М., Кіркімбаева Ж.С., Ттабекова С., Байболов А.Е. аза лтты аграрлы...»

«МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РФ ДЕПАРТАМЕНТ НАУЧНО-ТЕХНОЛОГИЧЕСКОЙ ПОЛИТИКИ И ОБРАЗОВАНИЯ ФГБОУ ВПО КОСТРОМСКАЯ ГСХА ТРУДЫ КОСТРОМСКОЙ ГОСУДАРСТВЕННОЙ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННОЙ АКАДЕМИИ Выпуск 80 КАРАВАЕВО Костромская ГСХА УДК 631 ББК 40 Редакционная коллегия: Г.Б. Демьянова-Рой, С.Г. Кузнецов, Н.Ю. Парамонова, С.А. Полозов, В.М. Попов, А.В. Рожнов, Ю.И. Сидоренко Ответственный за выпуск: А.В. Филончиков Труды Костромской государственной сельскохозяйственной академии. — Выпуск 80. — Караваево :...»

«Министерство образования и науки РФ Сибирский государственный технологический университет МОЛОДЫЕ УЧЕНЫЕ В РЕШЕНИИ АКТУАЛЬНЫХ ПРОБЛЕМ НАУКИ Всероссийская научно-практическая конференция (с международным участием) 14-15 мая 2015г. Сборник статей студентов и молодых ученых Том III Красноярск Министерство образования и науки Российской Федерации ФГБОУ ВО «Сибирский государственный технологический университет» МОЛОДЫЕ УЧЕНЫЕ В РЕШЕНИИ АКТУАЛЬНЫХ ПРОБЛЕМ НАУКИ Сборник статей студентов, аспирантов и...»

«Министерство сельского хозяйства Российской Федерации Департамент научно-технологической политики и образования Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования «Воронежский государственный аграрный университет имени императора Петра I» МОЛОДЕЖНЫЙ ВЕКТОР РАЗВИТИЯ АГРАРНОЙ НАУКИ МАТЕРИАЛЫ 65-Й НАУЧНОЙ СТУДЕНЧЕСКОЙ КОНФЕРЕНЦИИ ЧАСТЬ V Воронеж Печатается по решению научно-технического совета Воронежского государственного аграрного университета...»

«МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА ПЕНЗЕНСКОЙ ОБЛАСТИ ПЕНЗЕНСКАЯ ГОСУДАРСТВЕННАЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННАЯ АКАДЕМИЯ ООО «НАУЧНО-ПРОИЗВОДСТВЕННОЕ ПРЕДПРИЯТИЕ ИННАУЧАГРОЦЕНТР» МЕЖОТРАСЛЕВОЙ НАУЧНО-ИНФОРМАЦИОННЫЙ ЦЕНТР ПЕНЗЕНСКОЙ ГОСУДАРСТВЕННОЙ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННОЙ АКАДЕМИИ НАУЧНОЕ ОБЕСПЕЧЕНИЕ РАЗВИТИЯ АПК РОССИИ V Всероссийская научно-практическая конференция Сборник статей Февраль 2015 г. Пенза УДК 338.436.33(470) ББК 65.9(2)32-4(2РОС) Н 3 Под общей редакцией зав. кафедрой селекции и семеноводства...»

«Министерство сельского хозяйства Российской Федерации Министерство сельского хозяйства Республики Башкортостан ФГБОУ ВПО Башкирский государственный аграрный университет ООО «Башкирская выставочная компания» ИНТЕГРАЦИЯ НАУКИ И ПРАКТИКИ КАК МЕХАНИЗМ ЭФФЕКТИВНОГО РАЗВИТИЯ АПК Часть I ЭФФЕКТИВНОЕ ИСПОЛЬЗОВАНИЕ, ОХРАНА И ВОСПРОИЗВОДСТВО ПРИРОДНЫХ РЕСУРСОВ И ИННОВАЦИОННЫЕ ТЕХНОЛОГИИ ПРОИЗВОДСТВА ПРОДУКЦИИ РАСТЕНИЕВОДСТВА НАУЧНОЕ СОПРОВОЖДЕНИЕ ИННОВАЦИОННОГО РАЗВИТИЯ ЖИВОТНОВОДСТВА И ВЕТЕРИНАРНОЙ...»







 
2016 www.konf.x-pdf.ru - «Бесплатная электронная библиотека - Авторефераты, диссертации, конференции»

Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам.
Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам, мы в течении 1-2 рабочих дней удалим его.